Quelle méthode de stérilisation convient à votre type de charge ?
Choisir le bon processus de stérilisation commence par une compréhension claire du type de charge. Les déchets de laboratoire, les liquides, la verrerie, les matériaux poreux et les charges biologiques à haut risque réagissent chacun différemment pendant la stérilisation et nécessitent donc des cycles, des températures et des méthodes de manipulation spécifiques.
Liquides
Milieux de culture, réactifs ou liquides à éliminer
Qu'est-ce qu'une charge fluide ?
Les charges fluides ou liquides comprennent généralement des solutions ou des produits chimiques utilisés dans les environnements de laboratoire, comme les milieux de culture, mais peuvent englober tout matériau non solide nécessitant une stérilisation. Les milieux de croissance ou de culture peuvent être solides, liquides ou semi‑solides et sont conçus pour soutenir la croissance de micro‑organismes ou de cellules dans des conditions contrôlées. Différents milieux sont utilisés selon le type de cellules, et ils doivent être stérilisés avant utilisation, généralement dans un autoclave.
Si de nombreux milieux sont stérilisés à 121 °C pendant 15 minutes, certains nécessitent d’autres températures ou durées d’exposition. Pour cette raison, les autoclaves utilisés pour la stérilisation de milieux doivent pouvoir fonctionner avec une large gamme de températures et de paramètres de cycle.
Quels liquides d’élimination doivent être stérilisés ?
Les charges liquides à éliminer comprennent les déchets liquides devant être stérilisés avant élimination :
- Milieux de culture utilisés ou périmés (ex. bouillons nutritifs)
- Réactifs
- Échantillons liquides
- Solutions de nettoyage
- Déchets biologiques
Comment les fluides scellés sont-ils stérilisés ?
Certaines charges liquides doivent être stérilisées dans des récipients fermés. Dans ces cas, la purge d’air (freesteaming) suffit généralement pour l’évacuation de l’air, et une purge prolongée est rarement nécessaire. Comme pour la préparation de milieux, la rapidité du traitement est essentielle pour maintenir la qualité du produit. Des températures plus élevées que 121 °C sont souvent utilisées pour réduire les temps de stérilisation, et les temps de refroidissement doivent être aussi courts que possible.
Déchets
Qu’est‑ce qu’une charge de déchets mixtes ?
Une charge de déchets mixtes est composée de matériaux contaminés de types et de formes variés qui doivent être stérilisés en toute sécurité avant leur élimination. Cela inclut les déchets issus des laboratoires de microbiologie ainsi que des échantillons cliniques tels que le sang, les tissus et d’autres matières biologiques.
Une charge mixte typique peut contenir une combinaison d’éléments tels que :
- Sacs en plastique
- Conteneurs
- Tissus
- Gants
- Serviettes en papier
- Pipettes
- Plaques de culture
En raison de la complexité et de la diversité des matériaux, il est essentiel de ne pas surcharger la chambre de l’autoclave. Un chargement excessif peut empêcher une bonne pénétration de la vapeur et compromettre la stérilisation. Pour garantir des résultats constants et fiables, une validation multipoint (12 sondes) est recommandée.
Pour les applications impliquant des déchets à haut risque, Astell propose des options d’autoclaves conformes aux exigences de la Catégorie III (BSL‑3), incluant notamment une filtration HEPA et des systèmes de vide.
Pourquoi la stérilisation des charges de déchets mixtes est‑elle complexe ?
Les charges mixtes, qui incluent des matériaux variés dans différents types de contenants, présentent des défis spécifiques de stérilisation. L’un des principaux problèmes est la présence de petites poches d’air piégé, qui peuvent empêcher la vapeur de pénétrer efficacement.
Ces charges sont souvent placées dans des sacs en plastique et peuvent contenir des récipients en plastique susceptibles de fondre ou de s’affaisser avant la stérilisation, ce qui augmente encore le risque d’air piégé. Pour cette raison, il est recommandé d’utiliser un système de vide avancé afin d’améliorer l’évacuation de l’air.
Nous conseillons également d’utiliser des conteneurs dédiés aux déchets pour contenir les déversements éventuels et maintenir la chambre de l’autoclave propre, garantissant ainsi une stérilisation sûre et efficace.
Verrerie
L’autoclavage de la verrerie scientifique garantit une stérilisation efficace des surfaces. Une large variété d’articles en verre est utilisée dans les environnements de laboratoire, et la plupart nécessitent une stérilisation régulière. Parmi les exemples courants : fioles coniques ou jaugées, béchers, tubes à essai, cylindres gradués, coupelles de montre et autres éléments similaires.
Quels types de verrerie sont recommandés pour l’autoclavage ?
La verrerie en borosilicate ou en quartz est généralement recommandée, car ces matériaux résistent mieux aux températures et pressions élevées rencontrées lors des cycles d’autoclavage.
Quels sont les instruments considérés comme des instruments non emballés ?
Les instruments non emballés comprennent généralement les articles utilisés dans les procédures médicales, dentaires, vétérinaires, esthétiques ou ophtalmiques. Cette catégorie peut également inclure certains équipements utilisés dans les expériences de laboratoire.
Dans certains cas, des éléments plus volumineux, tels que des appareils de laboratoire ou des cages métalliques, doivent être stérilisés. Ils sont généralement traités comme des instruments non emballés afin d’assurer une stérilisation efficace.
Défis liés aux charges de verrerie et d’instruments non emballés
La stérilisation de la verrerie dans un autoclave nécessite une attention particulière pour éviter la casse ou l’éclatement. Il ne faut jamais sceller de la verrerie vide lors de l’utilisation d’un séchage par vide poussé. Un chargement et un déchargement corrects sont essentiels pour éviter les dommages, la surcharge ou les risques de brûlure.
Si nécessaire, vous pouvez intégrer une évacuation du condensat ainsi qu’un séchage en fin de cycle. Tous les chargements d’instruments bénéficient d’un séchage post‑cycle : les instruments non emballés sont séchés en chauffant l’air ambiant, tandis que les charges de verrerie peuvent nécessiter des procédures de séchage spécialisées.
Pour les petits modèles de paillasse (benchtop), les systèmes post‑vide améliorent l’efficacité du séchage, tandis que les unités de plus grande capacité doivent utiliser une cuve à pression chemisée pour garantir des résultats optimaux.
Charges poreuses
Quels types de charges poreuses peuvent être stérilisés dans un autoclave ?
Vous pouvez utiliser des autoclaves pour stériliser une grande variété de tissus et textiles. Dans les hôpitaux, cela inclut souvent des blouses, des ensembles d’instruments et d’autres articles réutilisables. Les cabinets vétérinaires utilisent également des autoclaves pour stériliser la literie animale, les instruments et des matériaux similaires.
Les services centraux de stérilisation (CSSD) utilisent généralement une combinaison de sachets et d’emballages, selon la taille et le type d’instruments chirurgicaux à protéger. Les petits instruments sont généralement placés dans des sachets, tandis que les éléments plus volumineux, comme les plateaux et bacs, sont emballés.
Les packs chirurgicaux, enveloppes et sacs à fermeture simple sont souvent scellés avec du ruban adhésif pour autoclave afin d’assurer une sécurité supplémentaire. Ce ruban change de couleur lorsqu’il atteint la bonne température de stérilisation, indiquant que la stérilisation a réussi. Il est important d’utiliser un ruban adapté à l’autoclave, car des substituts comme le ruban de masquage ne résistent pas aux conditions d’un cycle d’autoclavage.
Déchets dangereux
Recherche à haut risque
Les installations de Niveau de Biosécurité 3 (BSL‑3) mènent des travaux strictement réglementés impliquant des agents pathogènes humains, virus et bactéries dangereux, présentant de sérieux risques pour la santé et la sécurité. Les déchets issus de ces environnements peuvent contenir des micro‑organismes dangereux et doivent être stérilisés efficacement avant élimination. Parmi les microbes couramment manipulés dans les laboratoires BSL‑3 figurent Clostridium botulinum (botulisme), le virus de la fièvre jaune et Mycobacterium tuberculosis.
Dans certains cas, on utilise un autoclave à double porte, également appelé autoclave “pass‑through”. Le côté chargement (« sale » ou non stérile) est séparé du côté déchargement (« propre » ou stérile) par une cloison, souvent équipée d’un joint SPF (bio) afin d’éviter toute contamination croisée.
Les laboratoires BSL‑3 doivent également disposer de systèmes de rétention des effluents, incluant des filtres HEPA bactériologiques sur les sorties d’air, pour empêcher la libération d’agents pathogènes dangereux dans l’environnement.
Pourquoi la stérilisation des prions et d’autres microbes résistants est‑elle complexe ?
Pour les déchets dangereux, une enceinte chauffée est souvent utilisée afin d’assurer une distribution homogène de la température dans la cuve ou la chambre. Les micro‑organismes deviennent plus actifs à mesure que la température augmente : si la plupart sont éliminés au‑delà de 80 °C, certains nécessitent des températures beaucoup plus élevées et des temps d’exposition prolongés.
Les prions, par exemple, exigent des températures nettement plus élevées ainsi que des cycles prolongés pour être efficacement inactivés. Des paramètres de cycle personnalisés peuvent donc être nécessaires pour garantir que les déchets dangereux soient stérilisés de manière complète et sécurisée.
Comment pouvons-nous vous aider ?
FAQ
Qu’est‑ce qu’une charge liquide dans un autoclave ?
Une charge liquide comprend tout matériau non solide nécessitant une stérilisation, tels que les milieux de culture, les réactifs ou les déchets liquides.
Tous les milieux de culture nécessitent‑ils le même cycle de stérilisation ?
Quels types de liquides doivent être stérilisés avant élimination ?
Qu’est‑ce qu’une charge de déchets mixtes ?
C’est une combinaison de matériaux contaminés, sacs en plastique, contenants, gants, essuie‑tout, pipettes, boîtes ou plaques de culture, qui doivent être stérilisés avant leur élimination.
Pourquoi la stérilisation des charges mixtes est‑elle difficile ?
Ces charges emprisonnent souvent des poches d’air, en particulier à l’intérieur des sacs ou des contenants en plastique, ce qui empêche une bonne pénétration de la vapeur.
Faut‑il des autoclaves spéciaux pour les déchets à haut risque ?
Oui. Pour les applications BSL‑3, il est recommandé d’utiliser des autoclaves dotés d’une filtration HEPA, de systèmes de vide ou conformes à la Catégorie III.
Quels types de verrerie sont adaptés à l’autoclavage ?
La verrerie en borosilicate et en quartz est recommandée, car elle peut supporter des températures et des pressions élevées.
Comment la verrerie et les instruments sont‑ils séchés après stérilisation ?
Les instruments non emballés sèchent grâce à l’air chauffé. La verrerie peut nécessiter un séchage spécialisé ou des systèmes post‑vide (pour les unités de paillasse benchtop) ou une cuve chemisée (pour les autoclaves de grande capacité).
Quels matériaux poreux peuvent être stérilisés dans un autoclave ?
Des textiles tels que des blouses, des enveloppes, de la literie et des kits d’instruments réutilisables.
Comment les instruments chirurgicaux sont‑ils généralement emballés ?
Les petits articles sont placés dans des sachets, tandis que les plateaux et bacs plus volumineux sont emballés.
Qu’est‑ce qui distingue les déchets BSL‑3 ?
Elle peut contenir des agents pathogènes dangereux, tels que M. tuberculosis ou le virus de la fièvre jaune. Les déchets doivent être stérilisés de manière sûre afin d’éviter toute libération dans l’environnement.
Pourquoi est‑il difficile de stériliser les prions et d’autres microbes très résistants ?
Ils nécessitent des températures plus élevées et des temps d’exposition nettement plus longs. Des cycles de stérilisation personnalisés sont souvent nécessaires.